
Plateau de Phénotypage du Développement Racinaire
L’Atelier de Phénotypage du Développement Racinaire, créé en 2017, est hébergé par l’UMR 5004 «Institut des Sciences des Plantes de Montpellier». Il permet d’analyser, de façon non destructive et en cinétique, la croissance du système racinaire de plantules de diverses espèces (Arabidopsis, riz, tomate, colza, medicago….) cultivées in vitro. L’objectif de l’atelier est de développer des méthodes et outils visant à caractériser l’impact des conditions de culture sur la croissance racinaire des plantes. Il pourra s’agir de stress osmotiques, de carences nutritionnelles ou d’excès d’éléments minéraux, en combinaisons simples ou multiples. Ces mesures serviront de socle à des approches de génétique ou de physiologie moléculaire.
Les plantules sont cultivées in vitro sur boite de pétri 120×120 mm (Petit Modèle : PM) ou 240×240 mm (Grand Modèle : GM). L’atelier dispose d’un automate de prise de vue équipé d’une caméra linéaire permettant d’analyser jusqu’à 72 boites GM (soit 360 plantules de riz) et 200 boites PM (soit 1000 plantules d’Arabidopsis), avec une fréquence de prise de vue entre 2h et 24h.
L’automate de prise de vue est localisé dans une chambre de culture dédiée permettant d’ajuster la température, l’hygrométrie, l’éclairement et la photopériode aux besoins de l’expérimentateur.
L’utilisation d’un rétroéclairage colimaté à LED, d’un objectif télécentrique et d’une caméra linéraire noir et blanc de 16 Mpixels permettent d’obtenir des images d’une résolution de 12µm et à fort contracte (y compris pour Arabidopsis thaliana).
Les images générées sont stockées à long terme sur une baie de stockage sécurisée.
Les images générées peuvent être analysées automatiquement via un pipeline intégré dans la suite OpenAleaLab (https://team.inria.fr/virtualplants/software/). L’atelier est adossé à plusieurs programmes de recherche de l’unité. Toutefois, il est largement ouvert à la communauté scientifique au travers de collaborations avec des laboratoires locaux, nationaux et internationaux.
modalités d'accès
- L’accès à l’atelier se fait dans le cadre de collaboration scientifique.
- Toute demande d’accès doit être faite via le formulaire de demande et envoyée par mail à philippe.nacry@inrae.fr. Elle sera analysée et priorisée par le comité de pilotage de l’atelier. Après réception de l’avis, prendre contact avec Philippe Nacry pour organiser le déroulement des manipulations.
Personnels / Organigramme
Expertise
Domaine d’expertise :
Analyser non destructive et en cinétique la croissance du système racinaire de plantules de diverses espèces cultivées in vitro.
Prestations :
- Accompagnement de l’utilisateur, incluant la mise en place de l’expérimentation et l’assistance pendant le suivi de l’expérience,
- Accès aux équipements de l’IPSiM pour la préparation des milieux de culture, des boites et le repiquage des plantes
- La gestion et le stockage sécurisé des images
- La formation de l’utilisateur
- L’assistance et le conseil pour l’analyse des images générées
Matériels / Technologies
- Chambre de culture dédiée
- Température (12 à 35°C),
- Hygrométrie (50% à 95%),
- Eclairage Vegeled Floodlight (40 à 350 µE)
- Photopériode de 0 à 24H
- Automate de prise de vue
- 72 boites GM et 200 boites PM
- Baie de stockage sécurisée 50To
- Poste d’analyse d’images
Formations
- Accompagnement de l’utilisateur, incluant la mise en place de l’expérimentation et l’assistance pendant le suivi de l’expérience,
- Accès aux équipements de l’IPSiM pour la préparation des milieux de culture, des boites et le repiquage des plantes
- La gestion et le stockage sécurisé des images
- La formation de l’utilisateur
- L’assistance et le conseil pour l’analyse des images générées
Actualités
Publications
Fernandez R, Crabos A, Maillard M, Nacry P✉, Pradal C✉ (2022) High-throughput and automatic structural and developmental root phenotyping on Arabidopsis seedlings. Plant Methods, 18(1):127
Berger N, Demolombe V, Hem S, Rofidal V, Steinmann L, Krouk G, Crabos A, Nacry P, Verdoucq L, Santoni V✉ (2022) Root membrane ubiquitinome under short-term osmotic stress. Int. J. Mol. Sci., 23(4):1956
Kupcsik L, Chiodi C, Moturu TR, De Gernier H, Haelterman L, Louvieaux J, Tillard P, Sturrock CJ, Bennett MJ, Nacry P, Hermans C✉ (2021) Oilseed rape cultivars show diversity of root morphologies with the potential for better capture of nitrogen. Nitrogen, 2(4):491-505
Smokvarska M*, Charbel F*, Platre MP*, Fiche J-B, Alcon C, Dumont X, Nacry P, Bayle V, Nollmann M, Maurel C, Jaillais Y, Martinière A✉ (2020) A plasma membrane nanodomain ensures signal specificity during osmotic signaling in plants. Curr. Biol., 30(23):4654-4664.e4